小鼠主動脈內(nèi)皮細胞是研究血管生物學(xué)、動脈粥樣硬化、炎癥反應(yīng)及藥物篩選的重要模型。其分離與培養(yǎng)技術(shù)對于心血管疾病的研究至關(guān)重要。本文詳細介紹小鼠主動脈內(nèi)皮細胞的分離、純化和培養(yǎng)方法,以確保獲得高純度和高活性的細胞。
實驗材料與儀器
試劑
-磷酸鹽緩沖液(PBS,無鈣鎂)
-膠原酶(TypeII,0.1%-0.2%)
-內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基(如DMEM/F12+20%FBS+1%ECGS+1%青霉素/鏈霉素)
-70%乙醇(用于消毒)
-紅細胞裂解液(可選)
儀器與耗材
-超凈工作臺
-CO?培養(yǎng)箱(37°C,5%CO?)
-手術(shù)器械(眼科剪、鑷子、顯微鑷)
-細胞篩(100μm和40μm)
-離心機
-0.1%明膠包被的培養(yǎng)皿
實驗步驟
1.小鼠主動脈的獲取
1.小鼠:采用CO?窒息或頸椎脫臼法處死小鼠,并用70%乙醇消毒體表。
2.解剖主動脈:
-沿腹中線剪開胸腔和腹腔,暴露心臟和主動脈。
-用鑷子輕輕提起心臟,剪斷主動脈弓,并沿胸主動脈向下分離至髂動脈分叉處。
-將主動脈完整取出,置于預(yù)冷的PBS中,去除周圍脂肪和結(jié)締組織。
2.主動脈消化與內(nèi)皮細胞分離
1.酶消化法:
-將主動脈縱向剪開,用PBS沖洗3次以去除血液。
-浸泡于0.1%-0.2%膠原酶溶液中(37°C,15-30分鐘),期間輕柔振蕩促進消化。
-消化完成后,加入含血清的培養(yǎng)基終止反應(yīng)。
2.細胞收集:
-用移液槍反復(fù)吹打主動脈碎片,釋放內(nèi)皮細胞。
-過100μm和40μm細胞篩去除未消化組織,收集細胞懸液。
-離心(1000rpm,5分鐘),棄上清,用內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基重懸細胞。
3.內(nèi)皮細胞的純化
-差速貼壁法:將細胞懸液接種于未包被的培養(yǎng)皿中(37°C,1小時),使成纖維細胞優(yōu)先貼壁,隨后收集未貼壁的內(nèi)皮細胞。
-磁珠分選(可選):使用CD31或CD144抗體標記內(nèi)皮細胞,通過磁珠分選提高純度。
4.內(nèi)皮細胞的培養(yǎng)
1.培養(yǎng)皿包被:使用0.1%明膠(37°C,1小時)或纖連蛋白包被培養(yǎng)皿,提高內(nèi)皮細胞貼壁率。
2.細胞接種:將純化的細胞接種于包被的培養(yǎng)皿中,加入內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基(含20%FBS和ECGS)。
3.培養(yǎng)條件:
-37°C,5%CO?,飽和濕度培養(yǎng)。
-每2-3天換液一次,觀察細胞形態(tài)(呈鵝卵石樣鋪路石狀)。
4.傳代:當(dāng)細胞融合度達80%-90%時,用0.25%胰酶消化傳代(1:2或1:3比例)。
注意事項
1.無菌操作:所有步驟需在超凈臺內(nèi)進行,避免污染。
2.消化時間控制:膠原酶消化時間過長可能導(dǎo)致細胞損傷,需優(yōu)化實驗條件。
3.細胞鑒定:可通過免疫熒光檢測CD31、vWF或eNOS等內(nèi)皮標志物確認細胞純度。
4.避免過度傳代:原代內(nèi)皮細胞傳代次數(shù)建議不超過5代,以防表型丟失。